在利用外泌体运输PTX进行抗中流的研究中，由于间充质干细胞可以归巢(homing)至中流细胞微环境并且可以不通过基因操作即可对PTX运输，因此Pessina等采用间充质干细胞SR4987作为分泌外泌体的母代细胞，而后将SR4987与PTX共混，使SR4987分泌的外泌体含有PTX，再利用超速离心法将载有PTX的外泌体分离出来，研究其对体外人胰腺ai细胞株的影响。结果表明外泌体可以有效的运载PTX并不破坏其功能，小泡(主要指外泌体)溶液的蛋白质浓度在0.047～0.095mg/mL之间时可以诱导中流细胞凋亡50%，这种抑制效果与纯PTX对体外ai细胞的抑制效果相当。妊娠期间，胎盘可释放外泌体到母体循环，在正常妊娠或胎盘相关妊娠并发症中发挥重要作用。成都外泌体提取
密度梯度离心是基于差速超高速离心的改良技术。该方法需预先利用常用的梯度液介质如蔗糖、碘克沙醇和氯化铯等，在离心管中构筑从底部到顶部密度逐渐降低的密度梯度带。根据密度梯度构建和沉降方式的不同, 又可以分为速率区带离心法和等密度梯度离心法, 前者主要根据颗粒的沉降速率分离, 介质密度均小于外泌体密度, 离心时样品在向超速离心管底部移动时, 会通过密度不断增加的密度梯度区带, 密度大的颗粒更容易穿过密度更高的梯度层, 更快地到达管底, 因此控制离心的时间很重要; 等密度梯度离心法中的密度梯度区带, 则会根据样品液中各种溶质成分来进行组合, 离心过程中, 无论离心时间多久, 不同密度颗粒jin会富集到具有相同密度的梯度区带, 而不会沉淀到底部。成都外泌体提取外泌体可释放转化生长因子β（TGF-β）ji活TGF-β信号通路，促进中流的转移。
外泌体富含蛋白质、脂质和核酸分子，这些分子具有来源细胞的特异性，所以通过分析中流细胞所释放的外泌体分子特征就可部分反映其来源细胞表型及其生物学作用。现已发现多种中流外泌体来源的蛋白类分子标志物。例如，乳腺ai、结肠ai和胰腺ai中均可检测到磷脂酰肌醇蛋白聚糖1（glypican1，GPC1）的表达，且与乳腺ai和结肠ai相比，GPC1对胰腺ai的早期诊断尤具价值。前列腺ai患者血浆外泌体中凋亡抑制蛋白的表达增高则提示与中流进展相关。随着蛋白组学技术的发展，研究发现中流患者血液外泌体来源的蛋白标志物其诊断特异性和敏感性分别可达到95％和90％。
外泌体中存在着某些特定的蛋白质、脂质和多糖, 基于抗原–抗体特异性识别和结合作用原理, 可将外泌体从其他组分中分离出来。四次跨膜蛋白家族、脂膜、膜联蛋白、上皮细胞黏附分子或肝素等都可以作为抗原, 而捕获外泌体的抗体可以附着在平板、磁珠、二氧化硅、树脂、膜亲和过滤器、纤维素滤膜、聚酰氨基胺树状聚合物表面和微流控器件上。常用方法有酶联免疫吸附法和磁珠法等。酶联免疫吸附法使用聚苯乙烯微孔板作为抗体附着介质, 其结果用吸光度值表示, 该方法可以快速分析已知表面生物标志物的表达, 也可以瞬时读出外泌体的产量和特异性。磁珠法多使用共价包覆链霉亲和素的磁珠, 与样品一起孵育后可通过磁泳将被结合的外泌体从样品组分中分离出来。鉴于微米级磁珠可赋予更大的接触面积, 该方法不jin具有高度特异性, 还具有比超速离心更高的外泌体产率。外泌体及活性蛋白能直接穿透皮肤间隙，快速直达基底层起效。
外泌体基础医学和临床应用的探索和深入研究对如何准确及高纯度提取外泌体, 并完整保存提出了更高的技术要求。外泌体可通过差速超速离心在不同离心力下沉淀样品中不同的杂质组分, 并在100 000 ×g~200 000 ×g的转速下获取较纯的外泌体。差速超速离心技术被认为是外泌体分离的“金标准”, 也是目前常用的外泌体分离和浓缩方法。该方法可通过结合0.22 μm或0.45 μm孔径滤膜进行超滤来提高产物纯度减少外泌体的聚集, 其分离效率容易受到加速度、转子类型、旋转半径、沉降路径长度以及样品黏度等多种因素影响。在免疫方面，外泌体通过传递多种生物分子完成抗原呈递、免疫活化、免疫抑制及免疫耐受。血液外泌体质谱
不同类别的外泌体囊泡有三个征：表面具涂层的膜泡、内含纤维的膜泡、电子致密囊泡。成都外泌体提取
Knepper等通过对透射电镜得到的200个囊泡进行粒径分析，结果表明尿液中外泌体的粒径分布约为35～40nm，磷脂双分子层厚度约为直径的1/5～1/10。透射电镜结合免疫金标记法能够得到外泌体表面特征分子的信息，有助于揭示外泌体的产生机制与来源。动态光散射(dynamiclightscattering，DLS)和纳米颗粒跟踪分析(nanoparticletrackinganaly[1]sis，NTA)都是利用光学手段获得囊泡粒径分布的方法。两者的不同之处在于动态光散射通过检测散射光的强度计算得到颗粒粒径，而纳米颗粒跟踪分析通过追踪单个粒子的运动轨迹计算得到样品浓度、粒径分布等信息。成都外泌体提取
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