细胞转染操作方法:转染,是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入,转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例;化学介导方法很多,如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术;生物介导方法,有较为原始的原生质体转染,和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法,应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术,是目前转染效率较高的方法,同时具有细胞毒性很低的优势。但是,细菌转染方法的准备程序复杂,常常对细胞类型有很强的选择性,在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法,则各有其特点。瞬时和稳定表达DNA转染后,转入基因的表达可以在1-4天内检测到。徐州正规细胞高效转染试剂产品介绍
细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧:一、脂质体(Liposome)转染方法原理脂质体作为体内和体外输送载体的工具,已经研究的十分普遍,中性脂质体是利用脂质膜包裹DNA,借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电的阳离子脂质体,DNA并没有预先包埋在脂质体中,而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上,形成DNA-阳离子脂质体复合物,从而吸附到带负电的细胞膜表面,经过内吞被导入细胞。优点:与其它方法相比,有较高的效率和较好的重复性,它适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下较方便的转染方法之一。芜湖北京细胞高效转染试剂脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物。
细胞电转染实验的几点建议:1.电场强度要合适合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率;也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的较佳场强值,实验前应测定所转染细胞系的较佳电场强度。2.细胞状态要好用于电转的细胞一般选取处于对数生长期的细胞(15代以内,传代后2d)。因为处于对数生长期的细胞分裂旺盛,表面结构致密比稳定期的细胞差,电转后,细胞膜的恢复能力强,而且处于有丝分裂期的细胞更容易接受外源DNA
细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下,高电场强度会杀死50%-70%的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂,可以较大的降低细胞的死亡率,同时提高电穿孔转染效率。一般的瞬时转染 方法多采用脂质体法。
细胞转染常用步骤:1.转染试剂的准备①将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。②震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2.选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA,震荡后在加入合适体积的转染试剂,再次震荡。3.将混合液在室温放置10―15分钟。4.吸去培养板中的培养基,用PBS或者无血清培养基清洗一次。5.加入混合液,将细胞放回培养箱中培养一个小时。6.到时后,根据细胞种类决定是否移除混合液,之后加入完全培养基继续培养24-48小时~当复合物接近细胞膜时,通过内吞作用形成内体进入细胞。芜湖北京细胞高效转染试剂
形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附。徐州正规细胞高效转染试剂产品介绍
细胞转染实验的方法有哪些:1..电穿孔法。通过短暂的高电场电脉冲处理细胞,沿细胞膜的电压差异会导致细胞膜的暂时穿孔。DNA被认为是穿过孔扩散到细胞内的。电脉冲和场强的优化对于成功的转染非常重要,因为过高的场强和过长的电脉冲时间会不可逆地伤害细胞膜而裂解细胞。理论上说电穿孔法可用于各种细胞,且不需要另外采购特殊试剂,但需要昂贵的电转仪。此法每次转染需要更多的细胞和DNA,因为细胞的死亡率高。每种细胞电转的条件都需要进行多次优化。2.细菌介导的传染。传染需要将目的基因克隆到特定的细菌体系中,经过包装细胞的包装得到改造后的细菌,再进行传染。优点是转染效率特别高,尤其是难以转染的原代细胞、细胞。缺点是构建细菌周期长,环节多,易出错,费用也高。徐州正规细胞高效转染试剂产品介绍