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外泌体的提取、分离方法：梯度密度离心法。研究发现，外泌体的密度在1.1~1.19kg·L-1之间，因此，可以采用密度梯度离心法来分离外泌体。该方法是将超速离心结合蔗糖密度梯度或蔗糖垫结合，原理是先除去非囊泡物质，再通过梯度密度浓缩提取外泌体，该方法可以得到相对较为纯净的外泌体。传统的梯度密度方法通常需要离心16h，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分离出某些确切囊泡，因此，该方法可能不足以沉淀所有的外泌体。如果离心时间不充足，污染物质可能和外泌体保持在相同的密度层，特别是这个密度范围又比较宽。外泌体提取：可分离到大小相近的囊泡颗粒。合肥外泌体提取试剂直销厂家

外泌体的提取主要包括以下几种方式：一是超速离心法，这是目前外泌体提取较常用的方法。此种方法得到的外泌体量多，但是纯度不足，电镜鉴定时发现外泌体聚集成块，由于微泡和外泌体没有非常统一的鉴定标准，也有一些研究认为此种方法得到的是微泡不是外泌体。二是过滤离心，这种操作简单、省时，不影响外泌体的生物活性，但同样存在纯度不足的问题。三是密度梯度离心法，用此种方法分离到的外泌体纯度高，但是前期准备工作繁杂，耗时，量少。四是免疫磁珠法，这种方法可以保证外泌体形态的完整，特异性高、操作简单、不需要昂贵的仪器设备，但是非中性pH和非生理性盐浓度会影响外泌体生物活性，不便进行下一步的实验。五是PS亲和法，该方法将PS（磷脂酰丝氨酸）与磁珠结合，利用亲和原理捕获外泌体囊泡外的PS。该方法与免疫磁珠法相似，获得的外泌体形态完整，纯度较高。由于不使用变性剂，不影响外泌体的生物活性，外泌体可用于细胞共培养和体内注射。2016.9《ScientificReports》杂志发表了该方法较新数据，表明PS法可提取相当高纯度的外泌体。六是色谱法，这种方法分离到的外泌体在电镜下大小均一，但是需要特殊的设备，应用不普遍。合肥正规外泌体提取试剂厂家专利申请利用分离培养人尿液来源细胞并收集培养基来进行体外培养。

1996年GRaposo等发现类似于B淋巴细胞的免疫细胞也会分泌抗原呈递外泌体（antigenpresentingvesicle），所分泌的外泌体可以直接刺激效应CD4+细胞的抗一些病症反应。2007年HValadi等进一步发现细胞之间可以通过外泌体中RNA交换遗传物质。随着有关外泌体研究越来越多，研究者发现它普遍参与了机体免疫应答、抗原呈递、细胞分化、一些病症生长于侵袭等各种生物过程中。目前的主流观点认为，外泌体的产生过程为：细胞膜内陷，形成内体（endosome），再形成多泡体（multivesicularbodies，MVB），较后分泌到胞外成为外泌体。外泌体中携带有母细胞的多种蛋白质、脂类、DNA和RNA等重要信息。外泌体较早见于1981年，EGTrams等在体外培养的绵羊红细胞上清液中发现了有膜结构的小囊泡，并命名为exosome。对于外泌体的作用，当时推测为细胞排泄废物的一种方式。

外泌体是一种存在于细胞外的多囊泡体，可通过细胞内吞泡膜向内凹陷形成多泡内涵体，内涵体与细胞膜融合后释放其中的小囊泡。外泌体的直径在40-110nm之间，其中包含RNA、蛋白质、microRNA、DN段等多种物质，存在于血液、唾液、尿液、脑脊液和母乳等多种体液中。外泌体从发现至今已有30多年的历史，虽然较初被认为可能是细胞的“垃圾”，所以才被排出来，但是近年来研究表明外泌体具有功能活性并可进行细胞间信息传递。如今，研究已经发现外泌体在抗原提呈细胞中呈递抗原程中、一些病症细胞发生的发展、神经细胞信号转导过程中都发挥着重要作用。外泌体提取：样本的粘度与分离的外泌体纯度有显着的相关性。

用于外泌体提取的体液收集注意事项：1、抽血技巧。操作要轻柔迅速。试管可翻转8-10次使样本与抗凝剂混匀，避免剧烈摇晃。混匀后，将试管固定垂直放置于离心分离器，在顶部记录抽血的准确时间，因为抽血与离心之间的时间间隔可能是一个影响因素。外泌体在抽血后30分钟内是比较稳定的，若时间过长将导致外泌体数量增加。血小板极易因抽血时的物理因素而并释放出外泌体，其中包括接触、压力、切力。2、抽血时间。除了血液黏度，体内血液的各项指标在1天中变化很大。生理节律会对血小板的产生很大的影响。白细胞的募集和循环系统中促炎细胞和细胞会随时间变化。大量的具有特殊表面分子的微粒也被证明会随时间变化。目前尚无设计较好的实验对证实不同时间血液中外泌体的变化，故应在相同的时间采集样本。目前饮食是否会对EV产生影响尚未可知，但是由于脂蛋白可运载RNA且食物的摄取可以影响循环脂蛋白颗粒的类型、数量和作用，故抽血可在较后一次用餐后一段确定的时间进行。多聚物沉淀法早先应用于从血清等样本中收集病毒，现在也被用来沉淀外泌体。无锡外泌体提取试剂直销价

利用不同截留相对分子质量(MWCO)的超滤膜对样品进行选择性分离，便可获得外泌体。合肥外泌体提取试剂直销厂家

大量关于一些病症相关巨噬细胞的研究表明，一些病症相关巨噬细胞通过与一些病症细胞进行细胞间通讯，与一些病症进展和转移相关，然而对TAM与一些病症细胞之间通信的研究限制于可溶性因子，例如促炎细胞因子，其中包括趋化因子、炎症因子和生长因子等。较近的研究证据表明，外泌体是一些病症微环境中不同细胞类型之间的重要通讯媒介。外泌体将信息从一个细胞传递到另一个细胞并重编程受体细胞。目前大部分研究都集中在一些病症细胞分泌的外泌体，关于TAM衍生的外泌体及其对治病细胞的影响知之甚少。TAM具有两种相反的表型：M1亚型巨噬细胞具有抗一些病症作用，M2型巨噬细胞具有致瘤作用活性。TAM的表型由特定的一些病症来源的趋化因子和外泌体调节。较近的一项研究表明，一些病症来源的外泌体miRNA调节一些病症促进M2巨噬细胞的极化。然而，TAM衍生的外泌体对一些病症进展和转移的调节尚未明确定义。目前，TAM的外泌体概况仍然大部分未知，并且TAM衍生的外泌体对于一些病症进展在功能上是否必需还未确定。合肥外泌体提取试剂直销厂家