胰蛋白酶溶液(0.05%

科研实验中试剂取用应注意事项：1. 固体试剂的取用:取用固体药品时药匙必须是干净的.一支药匙不能同时取用两种或两种以上的试剂.药匙每取完一种试剂后都必须用干净的纸擦拭干净,以备下次使用.药匙的两端为大小两匙,取固体量较多时用大匙,较少时用小匙。2. 取用不定量(较多)液体——直接倾倒a. 瓶塞必须倒放在桌面上【防止药品腐蚀实验台或污染药品】；b. 直接倾倒时瓶口必须紧挨试管口，试管45度，并且缓缓地倒【防止药液损失】；c. 贴标签的一面必须朝向手心处【防止药液洒出腐蚀标签】；d. 倒完液体后，要立即盖紧瓶塞，并把瓶子放回原处，标签朝向外面【防止药品潮解、变质】。检测试剂盒是经过酶联免疫吸附反响进行实验来检测特定物质的检测试剂盒。胰蛋白酶溶液(0.05%,含酚红)

主要试剂配制：（1）PBS：PBS粉剂每袋加ddH2O定容至1000mL，调pH7.2，高压灭菌，4℃保存备用。（2）RPIM-1640培养基：临用前根据需要加15%胎牛血清，较后按1%体积分数加入双抗贮存液(青霉素+链霉素)，使青霉素和链霉素的终浓度分别为100 U/mL和100 U/mL，置于4℃冰箱保存。（3）台盼蓝染液：称取4g台盼蓝，于研钵中用少量双蒸水研磨，加双蒸水至100mL，1500rpm离心15min，吸取上层液，即为4%水溶液。用前，用1.8%氯化钠溶液稀释1倍，即为2%台盼蓝染液。柠檬酸钠(0.04mol/L):NaCl(0.02mol/L)缓冲液(pH4.0)液体试剂常用量筒量取，量筒的容量为：5mL、10mL、50mL、500mL等数种。

如何降低检测试剂盒实验的误差概率？检验技师。应具备从事实验室操作的基本素质和实践经验。能熟练操作实验仪器、器械，具有一定总结和分析问题的能力，对实验中出现的意外情况能及时妥善解决。使用校对过的微量移液器，排除自然误差。移液器准确与否对定量检测尤为重要。仔细阅读说明书。严格按照说明书要求进行规范化操作。检测试剂盒不同批号的试剂不可混用。值得改进的地方，反复试验确定成立后才能改进。洗涤干净。洗板不干净，酶结合物本底显色会呈现假阳性。洗涤液要新鲜，现用现配，陈旧的洗涤液会出现本底增高现象，也可能出现假阳性。

检测试剂盒具有灵敏、特异、简单、快速、稳定及易于自动化操作等特点，而且因为一日之内能够检查几百乃至上千份标本，因此在生物医学各领域的使用规模日益扩展。在检测试剂盒中一般有3次加样步聚，即加标本，加酶结合物，加底物。加样时应将所加物加在检测试剂盒板孔的底部，防止加在孔壁上部，并注意不行溅出，不行产生气泡。加标本一般用微量加样器，按规则的量参加板孔中。每次加标本应更换吸嘴，以免发作交叉污染，也可用一次性的定量塑料管加样。检测试剂盒具有灵敏、特异、简单、快速、稳定及易于自动化操作等特点。

检测试剂盒样品收集:血清：全血样品于室温放置2小时或4℃过夜后于1000×g离心20分钟，取上清即可检测，收集血液的试管应为一次性的无热原，无内毒液试管。血浆：抗凝剂推荐使用EDTA-Na2，样品采集后30分钟内于1000×g离心15分钟，取上清即可检测。避免使用溶血，血脂高样品。组织匀浆：用预冷的PBS (0.01M, pH=7.4)冲洗组织，去除残留血液（匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果），称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS（一般按1:9的重量体积比，比如1g的组织样品对应9mL的PBS，具体体积可根据实验需要适当调整，并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂）加入玻璃匀浆器中，于冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞，可以对匀浆液进行超声破碎，或反复冻融。后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟，取上清检测。检测试剂盒标本的重复冻融所发作的机械剪切力将对标本中的蛋白等分子发作损坏效果。茶多酚(TP)检测试剂盒(福林酚比色法)

液体培养基接种向肉膏蛋白胨液体培养基中接种少量菌体时，其操作步骤基本与斜面接种时相同。胰蛋白酶溶液(0.05%,含酚红)

检测试剂盒实验经验分析：洗板时，每次洗液加入后，应静置1分钟，使清洗更加彻底。没有洗板机时，倒去液体后，要将酶标板在报纸或毛纸上用力拍干（报纸就免了吧！）。洗液不够时，可用蒸馏水自行配制PH7.4，0.02M的磷酸缓冲液，加入0.1%的吐温20作为洗液。加入1/1000的叠氮钠后可长期保存（洗液先用现配不费多少事的）。底物是光敏感的，要在临用前现配（同前，避光！）。检测前，要打开酶标仪，使之稳定10分钟以上。底物有一定的毒性，终止液对皮肤有腐蚀性，应尽量避免接触（终止液为硫酸，小心毁容）。待检样品要澄清，否则会影响结果。温浴时间应遵守检测试剂盒规定。应尽量做双孔实验，这样才能保证数据的准确性。胰蛋白酶溶液(0.05%,含酚红)