Tris-EDTA缓冲液(10×TE

标准物质的正确使用:溯源性。溯源性是通过一条具有规定不确定度的不间断的比较链，使测量结果能够与规定的参考标准，通常是国家计量标准或国际计量标准联系起来的特性。食品质量分析中，很多分析结果是靠标准物质来溯源的，实验室在选购标准物质时应注意其证书是否能够证明其对国家计量标准的溯源性。有些标准物质由于与待测样品的物理化学特性不同，如块状与粒状、固体与液体、基体不完全匹配等，虽然溯源性能够达到要求，但分析结果的溯源性会受到影响。杀灭曲线的建立：每3-4天更换新的含药物培养基。Tris-EDTA缓冲液(10×TE,pH7.0-9.0)

如何正确保存和使用pH缓冲溶液：缓冲溶液配制后，应装在玻璃瓶或聚乙烯瓶中（碱性pH缓冲液，如，pH=9.18、pH=10.01、pH=12.46等，应装在聚乙烯瓶中）瓶盖严密盖紧，在冰箱中低温(5～10℃)保存，一般可使用六个月左右，如发现有混频器浊，发霉或沉淀现象，不能继续使用。使用时，应准备几个50mL的聚乙烯小瓶，将大瓶中的组冲溶液倒入小瓶中，并在环境温度下放置1～2个小时，等温度平衡后再使用。使用后不得再倒入大瓶中，以免污染，瓶中的缓冲溶液在＞10℃的环境条件下可以使用2～3天，一般pH=7.00、pH=6.86、pH=14.00三种溶液使用时间可以长一些，pH=9.18和pH=10.01溶液由于吸收空气中的二氧化碳，其pH值比较容易变化。多聚赖氨酸溶液(1×PLL,0.1mg/ml)注意事项：尽注意无菌操作，避免污染。

检测试剂盒操作注意事项：实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。严格按照说明书中标明的时间、加液量及顺序进行温育操作。洗涤酶标板时应充分拍干，不要将吸水纸直接放入酶标反应孔中吸水。试剂应按标签说明书储存，使用前恢复到室温。稀稀过后的标准品应丢弃，不可保存。所有液体组分使用前充分摇匀。加入试剂的顺序应一致，以保证所有反应板孔温育的。加入试剂的顺序应一致，以保证所有反应板孔温育的时间一样。使用干净的塑料容器配置洗涤液。使用前充分混匀检测试剂盒里的各种成份及样品。

用pH计测定配制好的盐溶液的pH值，使其在6.4~7.0之间。一般盐雾标准中要求试验过程中的盐雾收集液pH值在6.5~7.2之间。当pH值不在上述范围时，应用氢氧化钠（NaOH）或者冰乙酸（CH3COOH）进行调节。氢氧化钠可以使pH值升高，冰乙酸使pH值降低。通常只需要加入少量的即可调节pH值。在氯化钠溶液中加入少量冰乙酸，搅拌均匀，并用pH计测量溶液的pH值，直至其为3.0-3.1之间，试验过程中收集液的PH值应在3.1-3.3之间。配制好乙酸盐雾溶液后，加入氯化铜，其浓度为0.26g/L±0.02g/L（即0.205g/L±0.015g/L无水氯化铜）。调节溶液的pH值，直至其为3.0-3.1之间，试验过程中收集液的PH值应在3.0-3.1之间。试剂的稳定性对准确度非常重要。

BMC原代分离步骤：1) 抽取人的外周血于肝素抗凝管中，取足5mL新鲜血液，加入PBS按1：1稀释血液（一般**管2mL+2mL）。2) 取淋巴细胞分离液5mL于15mL灭菌离心管中待用。3) 吸取稀释血液，在离分层液上方1cm处，沿试管壁徐徐加入，使稀释血液重叠于分层液上，并与分离液形成明显界面。4) 室温，离心2000rpm，20min。此时离心管中形成5层：较上面是血浆，血浆层和淋巴细胞分离液之间是淋巴细胞层呈白膜状。5) 小心吸取中间呈白膜状的单个核细胞层，尽量全部吸出单个核细胞。加5倍以上体积的PBS洗2次，每次离心1500rpm，10min。试剂成份、纯度、用量及稳定性，才是保证试剂质量的关键所在。超敏ECL化学发光试剂盒

BMC原代分离步骤：吸取稀释血液，在离分层液上方1cm处，沿试管壁徐徐加入。Tris-EDTA缓冲液(10×TE,pH7.0-9.0)

检测试剂盒以免疫学反应为根底，将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。由于抗原、抗体的反应在一种固相载体-聚苯乙烯微量滴定板的孔中进行，每加入一种试剂孵育后，可通过洗刷除去剩余的游离反应物，从而确保试验结果的特异性与稳定性。运用双抗体夹心法测定标本水平。用纯化的抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次加入，再与HRP符号的抗体结合，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，通过完全洗刷后加底物TMB显色。检测试剂盒TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成终的黄色。颜色的深浅和样品呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值)，通过标准曲线核算样品的浓度。Tris-EDTA缓冲液(10×TE,pH7.0-9.0)