在饲养体系里,科研人员们会准确调控水的温度、电导率等参数,并设定固定的日常光照时刻,以保证斑马鱼能在实验室内大规模繁育,确保实验的有序进行。仪器设备实验室除了先进的饲养体系,还具有了先进的正置荧光显微镜、荧光定量PCR仪、荧光酶标仪、斑马鱼行为分析仪等检测设备。斑马鱼成鱼体长5cm左右,其胚胎通明,在受精72h后完结孵化,并在孵出后3个月内性成熟。成年斑马鱼的繁衍周期短(一般7d左右),若条件适宜,成年雌性斑马鱼可定期产卵(每次200~300个)。在斑马鱼的前期胚胎及幼体的发育过程中,尚无性别分解,原始性腺都是相同的且具有双向发育的潜能,易受环境(温度、光照、pH值等)因素的影响而改变其遗传性别。传统的免疫学模式生物相比便于开展大规模研究。养斑马鱼的技术
斑马鱼基因服务内容(1)基金写作与申请指导科研思路把握;立题及开题设计;资料格式优化;标书内容编撰优化;预算评估;分配方案设计(2)课题设计文献搜索查询;实验思路可行性分析;实验方法技术指标分析;整体设计协助(3)结题报告数据整理与统计;结题报告撰写;结题资料整理改进;**审评;资料校稿、排版与装订;组织**组考核(4)中期审核实验数据整理;报告整改;预算审计与评估;**审核;课题进度优化(5)论文发表期刊文章撰写;文章内容查重;投稿;投稿答复;实验补充(6)专利申请**查新;专利设计;专利撰写;审核意见答复小型斑马鱼实验室预算斑马鱼实验的用途是什么。斑马鱼实验
1999年,Herbomel等在观察斑马鱼的巨噬细胞个体发育时发现,处于胚胎发育早期的斑马鱼巨噬细胞就具有对外源微生物大肠杆菌高效吞噬的能力。在受精30小时后,胚胎巨噬细胞就已经可以吞噬***血液内和局部组织中的外源微生物。当给非血液系统中注射大肠杆菌后,5小时后即可在局部被斑马鱼巨噬细胞***,且此时除了***局部的30——50个活化巨噬细胞外,血液中未接触病原体的巨噬细胞也同样表现出活化特性,这提示斑马鱼体内可能还存在与哺乳动物相类似的细胞因子或趋化因子系统。
斑马鱼模型既可以像体外实验那样对作用靶点明确的候选化合物进行靶向筛选和药效学评价,进行单个或多个作用靶点的筛选和验证,也可以像哺乳动物一样对靶点不明或致病机理复杂疾病的***药物进行基于药效学的筛选和评价,能够提高药物早期药效学评价的灵敏性和可靠性,有助于在药物研发早期淘汰那些体内药效学评价结果不佳的候选化合物。同时,斑马鱼模型能够早期发现化合物毒性、早期鉴别化合物毒性靶***,从而做到“早期评价,早期淘汰”。将斑马鱼模型鱼体外实验和哺乳动物实验相结合,可以从整体上缩短药物临床前早期研发的实验周期,降低实验成本,提高实验预测的准确性,进而提高药物研发效率,降低药物研发风险。斑马鱼可用于人类疾病的研究的模式生物。
令人惊奇的是,这种生活在热带的鱼还可以“再造”被部分切除的组织,从而为从事修正受损脊髓的研讨人员打开了方便之门。现在,斑马鱼的使用正逐渐拓宽和深化到生命体的多种系统的发育、功用和疾病的研讨中,并用于遗传学、药物学、毒理学等诸多方面。在药品研发等方面,每年有很多新药进入临床或者临床前阶段,它们是否对人体有害需要进行科学的安全点评。“实验新星”斑马鱼再次担当重担,斑马鱼胚胎和幼鱼对有害物质十分敏感,同时用药简单,只需将药物放入养殖胚胎的水中或快速打针,用药量少、测验周期短。斑马鱼实验动物模型。小型斑马鱼实验室预算
斑马鱼行为学剖析体系。养斑马鱼的技术
报告基因选用GFP或RFP,**小启动子来自斑马鱼gata2基因;将上述载体与体外转录得到的Tol2转座酶的mRNA共同注射到斑马鱼的单细胞受精卵中,受精卵长大后成为founder;Founder外交(out-cross)得到F1代胚胎,从中挑选出对于报告基因具有组织特异性表达模式的胚胎,拍照记录后分类培养;F1长大后通过linker-mediatedPCR的方法鉴定对应于GFP(或RFP)表达图式的Tol2插入位点,并通过与已知基因组数据比较,对插入位点进行定位与分析;通过外交纯化得到转基因鱼,直至得到只含有单个插入品系的转基因鱼。养斑马鱼的技术
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