膜片钳电生理技术服务实验流程之标本制备和膜片钳实验系统:标本制备:根据研究目的的不同,可采用不同的细胞组织,如心肌细胞、平滑肌细胞、肿瘤细胞等,现在几乎可对各种细胞进行膜片钳的研究。对所采用的细胞,必须满足实验要求,一般多采用酶解分离法,也可采用细胞培养法;另外,由于与分子生物学技术的结合,现在也运用分子克隆技术表达不同的离子通道,如利用非洲爪蟾卵母细胞表达外源性基因等。膜片钳实验系统:根据不同的电生理实验要求,可以组建不同的实验系统,但有若干共同的基本部件,包括机械部分(防震工作台、屏蔽罩、仪器设备架)、光学部分(显微镜、视频监视器、单色光系统)、电子部件(膜片钳放大器、刺激器、数据采集设备、计算机系统)和微操纵器。膜片钳实验要从一大批的实验数据中,经过处理和分析,得出有意义、有价值的结果和结论。厦门神经生物学离子通道研究方案
膜片钳记录的几种形式:内面向外膜片(inside-outpatch)高阻封接形成后,在将微管电极轻轻提起,使其与细胞分离,电极端形成密封小泡,在空气中短暂暴露几秒钟后,小泡破裂再回到溶液中就得到“内面向外”膜片。此时膜片两侧的膜电位由固定电位和电压脉冲控制。浴槽电位是地电位,膜电位等于玻管电位的负值。如放大器的电流监视器输出是非反向的,则输出将与膜电流(Im)的负值相等。外面向外膜片(out-sidepatch)高阻封接形成后,继续以负压抽吸,膜片破裂再将玻管慢慢地从细胞表面垂直地提起,断端游离部分自行融合成脂质双层,此时高阻封接仍然存在。而膜外侧面接触浴槽液。宁波药理学膜片钳电生理技术网站全自动膜片钳系统技术指标:药液交换迅速。细胞内、外液的交换是在平面芯片上进行。
膜片钳的应用:对药物作用机制的研究:在通道电流记录中,可分别于不同时间、不同部位(膜内或膜外)施加各种浓度的药物,研究它们对通道功能的可能影响,了解那些选择性作用于通道的药物影响人和动物生理功能的分子机理。这是膜片钳技术应用较普遍的领域,既有对西药药物机制的探讨,也普遍用在重要药理的研究上。如开丽等报道细胞贴附式膜片钳单通道记录法观测到人参二醇组皂苷可抑制正常和“缺血”诱导的大鼠大脑皮层神经元L-型钙通道的开放,从而减少钙内流,对缺血细胞可能有保护作用。陈龙等报道采用细胞贴附式单通道记录法发现乌头碱对培养的Wistar大鼠心室肌细胞L-型钙通道有阻滞作用。
膜片钳的应用:对单细胞形态与功能关系的研究:将膜片钳技术与单细胞逆转录多聚酶链是反应技术结合,在全细胞膜片钳记录下,将单细胞内容物或整个细胞(包括细胞膜)吸入电极中,将细胞内存在的各种mRNA全部快速逆转录成cDNA,再经常规PCR扩增及待检的特异mRNA的检测,借此可对形态相似而电活动不同的结果做出分子水平的解释或为单细胞逆转录多聚酶链式反应提供标本,为同一结构中形态非常相似但功能不同的事实提供分子水平的解释。膜片钳的数据如何处理:通过渗透很快改变胞浆成分并达到平衡。
膜片钳电生理技术服务实验流程之电机制备和实验的记录和分析数据:电极制备:膜片微电极是将玻璃毛细管用电极拉制仪拉制而成的,主要分为以下步骤:拉制:膜片微电极是将玻璃毛细管用拉管仪拉制而成。涂硅酮树酯:将硅酮树酯涂于微电极的较尖锐端以外的部分,然后将其通过加热镍铬电阻线圈而烘干变固。热刨光:在显微镜下,将微电极尖锐端接近热源进行热刨光处理可提高巨阻抗封接的成功率。充灌微电极液:用于灌充微电极的液体需经为空滤膜过滤,除去妨碍巨阻抗封接形成的灰尘。进行实验,记录和分析数据:准备工作就绪后即可进行实验操作,数据记录和分析。膜片钳技术在可兴奋细胞如神经元、心肌细胞、肌纤维和胰腺细胞的研究中起至关重要的作用。无锡细胞生物学脑片膜片钳供应商
用膜片钳技术可以直接观察和分辨单离子通道电流及其开闭时程。厦门神经生物学离子通道研究方案
膜片钳技术在通道研究中的重要作用:1.与药物作用有关的心肌离子通道:心肌细胞通过各种离子通道对膜电位和动作电位稳态的维持而保持正常的功能。近年来,国外学者在人类心肌细胞离子通道特性的研究中取得了许多进展,使得心肌药理学实验由动物细胞模型向人心肌细胞成为可能。2.对离子通道生理与病理情况下作用机制的研究:通过对各种生理或病理情况下细胞膜某种离子通道特性的研究,了解该离子的生理意义及其在疾病过程中的作用机制。厦门神经生物学离子通道研究方案
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